Efecto de los extractos acuosos de hojas de plantas de
gobernadora (Larreas tridentata), hojasen (Flourensia cernua) y encino (Quercus pungens), sobre el crecimiento
micelial in vitro de hongos fitopatógenos
Effect of aqueous extracts of leaves of creosote bush (Larreas tridentata), tarbush (Flourensia cernua) and oak (Quercus pungens) on in vitro mycelial growth of phytopathogenic fungi
RESUMEN
En el presente estudio se evaluó el efecto inhibitorio de extractos acuosos de hojas de gobernadora
(Larrea tridentata), hojasen (Flourensia cernua) y encino (Quercus pungens), sobre el
crecimiento del micelio in vitro de cinco hongos fitopatógenos (Phytophthora capsici, Botrytis sp., Alternaria solani, Aspergillus flavus y Rhizopus sp.). Se realizaron extractos acuosos de las hojas secas de las tres especies de plantas a dos concentraciones diferentes (10% y 20%). Los extractos se añadieron a cajas Petri para formar un medio de cultivo extracto-Papa Dextrosa Agar (PDA). Posteriormente se inoculó con las diferentes cepas fitopatógenas y se determinó el porcentaje de inhibición del crecimiento del micelio de cada una de las cepas a las 24 h, 48 h, 72 h y 96 h. Los resultados obtenidos al utilizar los extractos de las tres especies de plantas a las dos concentraciones diferentes mostraron diferencias significativas en el porcentaje de inhibición del crecimiento del micelio de los diferentes hongos evaluados. Todos los extractos vegetales inhibieron el crecimiento del micelio de P. capsici y A. flavus a las 24 h, 48 h y 72 h de incubación en las dos concentraciones analizadas, mientras que a las 96 h de incubación el extracto acuoso de F. cernua presentó el mayor porcentaje de inhibición para las cepas de Botrytis sp. y Rhyzopus sp. en las dos concentraciones evaluadas.
ABSTRACT
In the present study the inhibitory effect of aqueous leaf extracts of creosote bush (Larrea tridentata), tarbush (Flourensia cernua) and oak (Quercus pungens) was evaluated on mycelial growth under in vitro conditions of five phytopathogenic fungi (Phytophthora capsici, Botrytis
sp., Alternaria solani, Aspergillus flavus and Rhizopus sp.). Aqueous extracts of dried leaves
of the three species of plants at two different concentrations (10% and 20%) were performed.
Extracts were added to Petri dishes to form a extract-Potato Dextrose Agar (PDA) medium.
Subsequently, these medium were inoculated with different pathogens strains and the inhibition
percentage of mycelium growth of each strain was determined at 24 h, 48 h, 72 h and
96 h. The two concentrations of the extracts of the three plant species showed significant
differences in the inhibition percentage of mycelium growth of the various fungi tested. All
extracts inhibited the growth of mycelium of P. capsici and A. flavus at 24 h, 48 h and 72 h
of incubation at the two concentrations tested. Whereas at 96 h of incubation the F. cernua
aqueous extract showed an inhibition percentage of mycelium growth of Botrytis sp. and
Rhizopus sp. strains at the two concentrations tested.
INTRODUCCIÓN
Las enfermedades de las plantas son de interés agronómico para el hombre,
debido a que generan importantes pérdidas económicas al perjudicar a los
cultivos y sus derivados (Agrios, 2005). Estas enfermedades son producidas
principalmente por hongos, bacterias, nemátodos y virus fitopatógenos, de los cuales los hongos son el grupo de mayor relevancia
económica, debido a que de las 100 000 especies de
hongos conocidas, más de 8000 producen enfermedades
en las plantas, en comparación con las 50 que producen
enfermedades en el hombre o en los animales.
Los hongos producen pérdidas significativas en los
productos alimenticios y en los granos durante su almacenamiento,
debido a que éstos afectan a su valor
nutritivo por la producción de micotoxinas (Domijan,
Feraica, Jurjevic, Ivil & Cvjetkovic, 2005; Koirala, Kumar, Yadar & Premarajan, 2005). A nivel mundial,
cerca del 25% de los cereales están contaminados con
micotoxinas, y más de 300 metabolitos fúngicos son
tóxicos para los seres humanos y animales (Galvano,
Piva, Ritieni & Galvano, 2001). En nuestro país, así
como en el resto del mundo, esta pérdida en productividad
es debida principalmente a hongos fitopatógenos,
tales como Alternaria, Botrytis, Aspergillus, Rhizopus,
Fusarium y Penicillium (Lopes & Martins, 2008; Griffin
& Chu, 1983; Pose, Ludemann, Segura & Fernández, 2004). Los principales efectos tóxicos de estos metabolitos
son carcinogenicidad, genotoxicidad, teratogenicidad,
nefrotoxicidad, hepatotoxicidad, trastornos
reproductivos e inmunosupresión (Rocha, Ansari &
Doohan, 2005). Dentro del grupo de los Oomycetes,
varios géneros han mostrado su importancia económica
como patógenos de plantas. Por ejemplo, el género
Phytophthora se encuentra entre los hongos más
destructivos del mundo, debido a que los daños que
les causa a sus hospederos representan pérdidas de
miles de millones de dólares en cultivos comerciales a
nivel mundial (Van West, Appiah & Gow, 2003).
Los fungicidas sintéticos son el método más utilizado
para el control de estos hongos fitopatógenos.
Sin embargo, estos productos han provocado el desarrollo
de mecanismos de resistencia en los hongos,
a la vez que generan residuos tóxicos en alimentos y
en el medio ambiente, poniendo en riesgo la salud del
hombre (Angulo, Armenta, García, Carrillo, Salazar &
Valdez, 2009). Una alternativa económica y eficiente
para el control de enfermedades de las plantas es
el uso de productos naturales derivados de plantas,
tales como extractos acuosos, etanólicos, acetónicos
y aceites esenciales (Gamboa, Hernández, Guerrero,
Sánchez & Lira, 2003; López, López, Vázquez, Rodríguez,
Mendoza & Padrón, 2005; Guerrero, Solís, Hernández,
Flores, Sandoval & Jasso, 2007), los cuales
han mostrado ser métodos de control factibles contra
hongos fitopatógenos. Además, resultan ser amigables
con el ambiente, debido a que sus residuos son fáciles de degradar, se pueden utilizar en el control
de patógenos de productos agrícolas en poscosecha,
y permiten la obtención de productos agrícolas con
calidad para la exportación (Guerrero et al., 2007). Por
tanto, surge la necesidad de buscar métodos alternativos
para el control de fitopatógenos que afectan tanto
a los cultivos, granos o cereales para la alimentación
humana sin la necesidad de que se presenten problemas
de intoxicación, y que éstos sean amigables con
el medio ambiente y de bajo coste. Por lo anterior, el
objetivo del presente trabajo fue evaluar el efecto de
extractos acuosos de hojas de gobernadora (Larrea tridentata),
hojasen (Flourensia cernua) y encino (Quercus
pungens), sobre el crecimiento del micelio de cinco
hongos fitopatógenos (Phytophthora capsici, Botrytis
sp., Alternaria solani, Aspergillus flavus y Rhizopus
sp.) en condiciones in vitro.
MATERIALES Y MÉTODOS
Muestreo y colecta vegetal
Se realizó un estudio entre los meses de septiembre de
2013 hasta finalizar la primavera de 2014, realizando
un total de seis colectas (dos en otoño, dos en invierno
y dos en primavera) de ramas de las tres especies
en estudio (L. tridentata, F. cernua y Q. pungens). De
cada colecta se tomaron 10 muestras, una muestra
por individuo de 500 g de hojas frescas de cada especie
vegetal. Los muestreos se realizaron en la Sierra
El Presidio, municipio de Juárez, Chihuahua, México.
Posterior a la colecta, las ramas fueron envueltas en
papel periódico para su traslado al Laboratorio de Microbiología
Bucal de la Universidad Autónoma de Ciudad
Juárez. En el laboratorio, hojas de las diferentes
especies se desprendieron de las ramas y se dejaron
secar a temperatura ambiente por un periodo de cinco
días sobre papel de periódico.
Origen y mantenimiento de las especies
de hongos
Las especies A. solani y A. flavus se adquirieron del
cepario del Centro de Investigación y de Estudios
Avanzados del Instituto Politécnico Nacional de la
unidad de Irapuato, Guanajuato, México. La cepa de
P. capsici fue donada del cepario particular del Dr.
Pedro Osuna de la Universidad Autónoma de Ciudad
Juárez. Las especies de Rhizopus sp. y Botrytis sp. se
aislaron de frutos de papa y se identificaron de acuerdo
con las claves taxonómicas de Barnett (1969).
Todas las especies se preservaron según lo indica López
et al. (2005) para que éstas no perdieran su patogenicidad.
Las cepas fúngicas se mantuvieron en medio
de papa dextrosa agar (PDA).
Elaboración de extractos acuosos
Las hojas secas se sumergieron en una solución de
hipoclorito al 2% (v/v) por dos minutos para eliminar
algunos contaminantes como tierra, bacterias y
polvo. Después se enjuagaron en agua destilada dos
veces para eliminar el cloro residual. Para realizar los
extractos, las hojas secas de cada especie se pesaron
para obtener las concentraciones de 10% y 20% (p/v)
y se colocaron en un vaso de precipitado. Posteriormente,
se agregó 400 ml de agua destilada y se dejaron
reposar por 3 h. Una vez obtenido el extracto,
se filtró el contenido usando un filtro Watman # 3. A
los extractos se les agregó el peso (peso o volumen)
necesario de PDA para obtener un extracto denominado
extracto-PDA. Los extractos-PDA se esterilizaron
durante 15 min a una temperatura de 125 °C en autoclave
(Felisia modelo Fe-369). Una vez esterilizados
los medios de cultivo extractos-PDA se vació aproximadamente
15 ml de medio extracto-PDA en cajas de
Petri. Una vez que se prepararon los medios de cultivo
extracto-PDA se procedió a inocular cada una de las
tres réplicas preparadas para cada uno de los extractos
con aproximadamente 5 mm de cultivo de PDA, el
cual contenía micelio de los cinco hongos fitoptógenos
mencionados anteriormente.
Tratamiento y actividad fungicida
El experimento se realizó bajo un diseño completamente
al azar. Las cajas Petri, previamente inoculadas, se
incubaron en una cámara.de.crecimiento (CONVIRON
Model I-18L, Winnipeg, Canada) a una temperatura
de 25 °C ±1.°C. El crecimiento del micelio de cada uno
de los hongos fitopatógenos se registró a cuatro tiempos
diferentes (24 h, 48 h, 72 h y 96 h). Los valores
del crecimiento del micelio se usaron para calcular el
porcentaje de inhibición del crecimiento del micelio,
el cual fue medido como el porcentaje de inhibición
del crecimiento radial del micelio de las especies de
los hongos crecido en placas con medio de cultivo-PDA
con extractos vegetales con respecto al control crecido
en placas con medio de cultivo-PDA sin extractos vegetales.
El porcentaje de inhibición del crecimiento del
micelio se calculó mediante la fórmula:
`%I.C.M. = ((Dc - Dt)/(Dc))×100 .` (1)
Donde:
%I.C.M. = es el porcentaje de inhibición del crecimiento
del micelio.
Dc = es el diámetro del crecimiento del micelio en la
caja de Petri correspondiente al control.
Dt = es el diámetro del crecimiento del micelio en la caja
de Petri correspondiente al tratamiento.
Análisis estadístico
Los datos del porcentaje de inhibición del crecimiento
micelial se evaluaron a través de un análisis de varianza
(ANOVA), usando para ello el programa estadístico
SPSS (versión 15.0). Posteriormente se aplicó una
prueba de medias Duncan.
RESULTADOS
El objetivo del presente trabajo fue evaluar el efecto
de los extractos acuosos de hojas de gobernadora (L.
tridentata), hojasen (F. cernua) y encino (Q. pungens),
sobre el crecimiento del micelio de cinco hongos fitopatógenos.
En esta dirección, el crecimiento del micelio
se registró a cuatro tiempos diferentes (24 h, 48 h,
72 h y 96 h) y a dos concentraciones distintas (10%
y 20%). Los datos obtenidos se usaron para calcular
el porcentaje de inhibición del crecimiento de las cepas
con el objetivo de determinar cuál de los extractos
acuosos ejercía un mayor efecto sobre los diferentes
hongos fitopatógenos. Los valores del porcentaje de
inhibición del crecimiento del micelio se evaluaron a
través de un análisis de varianzas (ANOVA). Los resultados
mostraron que a las 24 h de incubación el
porcentaje de inhibición de los tres extractos acuosos
en las dos concentraciones evaluadas no mostraron
diferencias estadísticas significativas (p > 0.05) sobre
el crecimiento del micelio de A. solani, Botrytis sp., P.
capsici, A. flavus y Rhyzopus sp., esto debido principalmente
a que no se observó crecimiento durante
este tiempo de incubación.
Al evaluar el porcentaje de inhibición del crecimiento
del micelio a las 48 h de incubación, el extracto
acuoso de F. cernua obtuvo una mejor inhibición para
la cepa de A. solani en las dos concentraciones evaluadas,
mientras que a la concentración del 10% el
extracto de Q. pungens aumentó el crecimiento de la cepa más que su control (tabla 1). Asimismo, el extracto
de F. cernua presentó el mayor porcentaje de inhibición
para la cepa de Botrytis sp. en las dos concentraciones
evaluadas (tabla 1), sin embargo, el extracto
de L. tridentata permitió el crecimiento de la cepa más
que su control a la concentración del 10%, mientras
que a la concentración del 20% el extracto de Q. pungens
presentó un menor porcentaje de inhibición del
crecimiento del micelio (tabla 1). Cuando se evaluaron
los porcentajes de inhibición de los tres extractos
acuosos sobre las cepas de P. capsici y A. flavus se observó
que los tres extractos inhibieron al 100% a estas
cepas en las dos concentraciones evaluadas (tabla 1).
El extracto acuoso de L. tridentata y F. cernua mostraron
los mayores porcentajes de inhibición para la cepa
de Rhyzopus sp. en ambas concentraciones evaluadas,
mientras que los extractos acuosos de Q. pungens
presentaron los menores porcentajes de inhibición del
crecimiento del micelio para dicha cepa (tabla 1).
Tabla 1.
Porcentaje de inhibición de tres extractos acuosos a las concentraciones de 10% y 20%, sobre el crecimiento del micelio de A. solani, Botrytis sp., P. capsici, A.
flavus y Rhyzopus sp., después de un periodo de incubación de 48 h. Las diferentes letras dentro de la columna indican diferencias estadísticas significativas
a p < 0.05.
Al evaluar porcentaje de inhibición del crecimiento
del micelio a las 72 h de incubación se observó que el
extracto de F. cernua mostró el mayor porcentaje de inhibición del crecimiento del micelio de la cepa A. solani
a la concentración del 10%, sin embargo, el extracto
acuoso de L. tridentata aumentó el crecimiento
del micelio de dicha cepa a esta misma concentración
(tabla 2). A la concentración del 20% se observó que
el extracto acuoso de L. tridentata presentó el mayor
porcentaje de inhibición del crecimiento del micelio
para la cepaA. solani . En contraparte, el extracto de
Q. pungens presentó el menor porcentaje de inhibición
(tabla 2). Cuando se evaluó el porcentaje de inhibición
de los extractos acuosos sobre la cepa de
Botrytis sp. se observó que el extracto de F. cernua
presentó los mayores porcentajes de inhibición en las
dos concentraciones evaluadas (tabla 2). Asimismo,
el extracto de L. tridentata mostró el menor porcentaje
de inhibición del crecimiento del micelio de Botrytis
sp. a la concentración del 10% y Q. pungens a
la concentración del 20%. Cuando se evaluaron los
porcentajes de inhibición de los tres extractos acuosos
sobre las cepas de P. capsici y A. flavus se observó
que los tres extractos inhibieron al 100% a estas
cepas en las dos concentraciones evaluadas (tabla 2). El extracto de L. tridentata mostró el mayor porcentaje
de inhibición del crecimiento del micelio de Rhyzopus
sp. a la concentraciones del 10%. Contrariamente,
este mismo extracto presentó el menor porcentaje de
inhibición a la concentración del 20% (tabla 2).
Tabla 2. Porcentaje de inhibición de tres extractos acuosos en concentraciones de 10% y 20%, sobre el crecimiento del micelio de A. solani, Botrytis sp., P. capsici, A. flavus
y Rhyzopus sp., después de un periodo de incubación de 72 h. Las diferentes letras dentro de la columna indican diferencias estadísticas significativas a p < 0.05.
Al evaluar el porcentaje del crecimiento del micelio
a las 96 h de incubación, el extracto de Q. pungens al
10% obtuvo una mejor inhibición para la cepa A. solani,
mientras que el extracto de L. tridentata fue el que
presentó una menor inhibición (tabla 3). A la concentración
del 20%, el extracto de L. tridentata presentó
una mayor inhibición y el extracto de F. cernua la menor
inhibición del crecimiento del micelio (tabla 3). El
extracto de F. cernua presentó el mayor porcentaje de
inhibición para la cepa de Botrytis sp. Sin embargo, el
extracto de L. tridentata presentó la menor inhibición
de la cepa a la concentración del 10%, mientras que
a la concentración del 20% el extracto de Q. pungens presentó una menor inhibición del crecimiento del micelio.
En el presente estudio todos los extractos a las
dos concentraciones evaluadas inhibieron al 100% a
la cepa de P. capsici (tabla 3). Los extractos de L. tridentata
y F.cernua mostraron los mayores porcentajes
de inhibición del crecimiento del micelio para la
cepa de A. flavus en ambas concentraciones, mientras
que el extracto de Q. pungens presentó los menores
porcentajes de inhibición (tabla 3). El extracto
de F. cernua mostró el mayor porcentaje de inhibición
del crecimiento del micelio de Rhyzopus sp. en ambas
concentraciones, contrariamente el extracto de Q.
pungens que presentó el menor porcentaje de inhibición
a la concentración del 20% (tabla 3).
Tabla 3. Porcentaje de inhibición de tres extractos acuosos en concentraciones de 10% y 20%, sobre el crecimiento del micelio de A. solani, Botrytis sp., P. capsici, A. flavus
y Rhyzopus sp., después de un periodo de incubación de 96 h. Las diferentes letras dentro de la columna indican diferencias estadísticas significativas a p < 0.05.
En la figura 1 y 2 se muestran los efectos de los
extractos sobre P. capsici, A. solani y Botrytis sp. a las
dos concentraciones evaluadas en el presente estudio.
Figura 1. Efecto de los extractos en los hongos fitopatógenos a una concentración
de 10%. a) Control de P. capsici, b) P. capsici en extracto de Q. pungens, c)
P. capsici en extracto de L. tridentata, d) P. capsici en extracto de F. cernua,
e) control de A. solani, f) A. solani en extracto de Q. pungens, g) A. solani
en extracto de L. tridentata, h) A. solani en extracto de F. cernua, i) control
de Botrytis sp., j) Botrytis sp. en extracto de Q. pungens, k) Botrytis sp. en
extracto L. tridentata, l) Botrytis sp. en extracto de F. cernua.
Fuente: Elaboración propia.
Figura 1. Efecto de los extractos en los hongos fitopatógenos a una concentración
de 10%. a) Control de P. capsici, b) P. capsici en extracto de Q. pungens, c)
P. capsici en extracto de L. tridentata, d) P. capsici en extracto de F. cernua,
e) control de A. solani, f) A. solani en extracto de Q. pungens, g) A. solani
en extracto de L. tridentata, h) A. solani en extracto de F. cernua, i) control
de Botrytis sp., j) Botrytis sp. en extracto de Q. pungens, k) Botrytis sp. en
extracto L. tridentata, l) Botrytis sp. en extracto de F. cernua.
Fuente: Elaboración propia. Close
Figura 2. Efecto de los extractos en los hongos fitopatógenos a una concentración
de 20%. a) Control de P. capsici, b) P. capsici en extracto de Q. pungens, c)
P. capsici en extracto de L. tridentata, d) P. capsici en extracto de F. cernua,
e) control de A. solani, f) A. solani en extracto de Q. pungens, g) A. solani
en extracto de L. tridentata, h) A. solani en extracto de F. cernua, i) control
de Botrytis sp., j) Botrytis sp. en extracto de Q. pungens, k) Botrytis sp. en
extracto L. tridentata, l) Botrytis sp. en extracto de F. cernua.
Fuente: Elaboración propia.
Figura 2. Efecto de los extractos en los hongos fitopatógenos a una concentración
de 20%. a) Control de P. capsici, b) P. capsici en extracto de Q. pungens, c)
P. capsici en extracto de L. tridentata, d) P. capsici en extracto de F. cernua,
e) control de A. solani, f) A. solani en extracto de Q. pungens, g) A. solani
en extracto de L. tridentata, h) A. solani en extracto de F. cernua, i) control
de Botrytis sp., j) Botrytis sp. en extracto de Q. pungens, k) Botrytis sp. en
extracto L. tridentata, l) Botrytis sp. en extracto de F. cernua.
Fuente: Elaboración propia. Close
DISCUSIÓN
El control de las enfermedades producidas por los
hongos fitopatógenos se ha llevado acabo principalmente
con pesticidas sintéticos. Sin embargo, un gran
número de pequeños agricultores no tienen el acceso
a este tipo de productos. Además se ha reportado
que este tipo de productos ha generado problemas de
salud y daños ecológicos causados por un uso inadecuado
y por una sobreexplotación de estos compuestos.
Esto ha ocasionado un gran desafío para buscar
productos más amigables con el medio ambiente. Los
valores medios del crecimiento radial de los cinco
hongos fitopatógenos crecidos en medios de cultivo
con diferentes extractos vegetales en las distintas
concentraciones reflejan que los elementos anti-fúngicos
acuosos de hojas de estas plantas pueden ayudar
a controlar las enfermedades que provocan estos
hongos en las plantas, granos o cereales. Los principios
activos anti-fúngicos solubles en agua son los
responsables de la actividad anti-fúngica. Las plantas
usadas en este estudio se encuentran distribuidas
ampliamente en todo el desierto chihuahuense,
a excepción de Q. pungens, por lo que pueden estar
disponibles ampliamente en cualquier época del año.
Además, el método de extracción es muy fácil lo cual
puede ser explotado en el control de los hongos en
condiciones in vivo. El extracto vegetal más eficiente
para controlar a los cinco hongos fitopatógenos fue el
de F. cernua, ya que presentó un alto porcentaje de inhibición
del crecimiento del micelio comparado con los
otros extractos elaborados con Q. pugens y L. tridentata.
López et al. (2005) realizó un estudio sobre extractos
acuosos de hojasen y gobernadora, mostrando
que los hongos fueron inhibidos en mayor porcentaje
por los extractos de la gobernadora (entre 90% y 100%)
que los del hojasen (entre 40% y 50%). Estos resultados
son contradictorios a los observados en el presente
estudio, donde el hojasen fue el extracto que presentó
el mayor porcentaje de inhibición (68% en todos los
hongos), mientras que los extractos de la gobernadora
presentaron tan sólo 58.8%. Lira-Saldívar, Balvantín-
García, Hernández-Castillo, Gamboa-Alvarado, Jasso-
De Rodríguez & Jiménez-Díaz (2003) observaron que
los diferentes extractos de gobernadora son eficientes
para contrarrestar hongos fitopatógenos. Velázquez,
Baños, Hernández, Guerra & Amora (2008) indicaron
que una estrategia para el control de Rhizopus sp.
es la utilización de los extractos acuosos de algunas
plantas, como se ha observado en el presente estudio.
Los tratamientos son efectivos contra este hongo, pues inhiben su desarrollo un 49.5%. Gamboa et al.
(2003) utilizaron la planta de hojasen para elaborar
extractos metanólicos contra la cepa de Rhizocthonia
sp., logrando resultados sobresalientes contra este
fitopatógeno. En el presente estudio se ha demostrado
que los extractos de esta planta presentaron los
menores crecimientos de los hongos evaluados. Otros
autores han reportado muy buenos resultados en el
control de Rhizopus stolonifer, A. flavus y A. niger con
extractos acuosos de Azadirachta indicha (Singh, Prasad
& Sinha, 1993).
En la actualidad, en México, al igual que en el resto
del mundo, la enfermedad de las plantas conocida
como marchitez del chile, producida por P. capsici, es
un grave problema para los productores de esta hortalizas
(Lamour, Stam, Jupe, Huitema, 2012). Se ha
reportado que en el año 2011 se registró en México
una producción de dos millones de toneladas de chile,
lo cual representa alrededor de 13 224 millones de
pesos (Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo
Rural, Pesca y Alimentación [Sagarpa], 2014),
reflejando la importancia económica que tiene este
fitopatógeno, ya que es difícil controlar debido a que
puede causar múltiples síndromes al infectar raíces,
follaje y frutos del cultivo de chile (Oelke, Bosland
& Steiner, 2003). El método de rotación de cultivo
no ha sido efectivo, pues sus oosporas tienen resistencia
a la desecación, a las bajas temperaturas, a
la capacidad de sobrevivir en el suelo aun sin haber
plantas hospederas, así como otras condiciones desfavorables.
Otro aspecto que ha sido de poca ayuda
es el uso de químicos en los cultivos de chile, ya que
se ha reportado resistencia o tolerancia de P. capsici
a gran cantidad de fungicidas, tanto en laboratorio
como en campo. En el presente estudio, el fitopatógenos
más afectado por los tres tipos de extractos fue P.
capsici, en tanto no presentó crecimiento con ningún
tratamiento y sólo creció sin restricción en el control
sin extractos vegetales.
CONCLUSIONES
El extracto más eficiente para controlar los cinco tipos
de fitopatógenos fue el de F. cernua, ya que presentó
un alto porcentaje de inhibición en comparación
con los extractos elaborados con Q. pugens y L.
tridentata. En cuanto al uso de las dos concentraciones
distintas, no existe una diferencia significativa
entre ambos usos, por lo que se puede utilizar
la concentración de 10% o 20% indiferentemente. El
fitopatógeno más afectado por los tres tipos de extractos fue P. capsici, pues no presentó crecimiento en los
tratamientos, sólo en el control donde se observó que
crecía sin restricción alguna, por lo tanto, para combatir
este fitopatógeno es necesario evaluar en estos
tres extractos en condiciones in vivo.
AGRADECIMIENTOS
Se extiende un agradecimiento al Departamento de Ciencias Químico-Biológicas de la Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, por el apoyo a este proyecto interno registrado.